植物组织培养过程论文参考文献

收稿日期：2007-10-25基金项目：深圳市科技和信息局基金资助项目作者简介：王丹（1982-），女，辽宁本溪人，硕士研究生，从事植物生物技术研究。注：雷江丽为通讯作者。大花美人蕉茎尖组织培养技术研究王 丹1,2，雷江丽2，吴燕民3，吕 慧2，郁继华1(1.甘肃农业大学 农学院，甘肃 兰州 730070；2.深圳市园林科学研究所，广东 深圳 518003；3.中国农业科学院 生物技术研究所，北京 100081)摘 要：以大花美人蕉（Canna×generalis）根茎茎尖为外植体进行组织培养技术研究，筛选出芽诱导适宜的培养基为MS + 6-BA 8.0mg/L（单位下同）+ TDZ 0.03；MS + 6-BA 8.0 + TDZ 0.03 + NAA 0.1 培养基能较好地诱导分化出丛生芽, 继代增殖培养中与MS + 6-BA 3.0 + TDZ 0.03 + NAA 0.1 培养基交替使用可减少畸形芽，增殖系数达1.67；适宜的生根培养基为MS + 6-BA 1.0 + NAA 0.5，生根率达66.67%，且植株生长健壮，移栽易成活。关键词：大花美人蕉；茎尖；组织培养中图分类号：Q943.1 文献标识码：A 文章编号：1009-7791(2008)01-0033-04Research on Shoot-tip Culture of Canna×generalisWANG Dan1,2, LEI Jiang-li2, WU Yan-min3, LÜ Hui2, YU Ji-hua1(1.College of Agronomy, Gansu Agricultural University, Lanzhou 730070, Gansu China; 2.Shenzhen Institute of LandscapeGardening, Shenzhen 518003, Guangdong China; 3.Biotechnology Research Institute, Chinese Academy of AgriculturalSciences, Beijing 100081, China)Abstract: The paper mainly studied on tissue culture of Canna×generalis with the stem tips asexplants. The results showed that the bud inoculation medium was MS + 6-BA 8.0mg/L+ TDZ0.03mg/L; the best of clump shoot induction and differentiation medium was MS + 6-BA 8.0mg/L +TDZ 0.03mg/L + NAA 0.1mg/L; using MS + 6-BA 3.0mg/L + TDZ 0.03mg/L + NAA 0.1mg/L asproliferation medium, an optimal proliferation rate was obtained. When the two kinds of mediumused alternatively, the effect was better. The optimum rooting medium was MS + 6-BA 1.0mg/L +NAA 0.5mg/L, the rate of rooting could reach 66.67%, and cultured in this medium, the plant grewwell and easy to survival.Key words: Canna×generalis; shoot-tip; tissue culture大花美人蕉(Canna×generalis)属美人蕉科(Cannaceae)美人蕉属(Canna)的园艺杂交种[1]，是多年生喜光宿根草本花卉，原产美洲热带和非洲等地。其枝叶茂盛、花朵艳丽、姿态优美、花期长，在深圳地区几乎全年开花，是配置大型花坛的优良品种。大花美人蕉不仅观赏价值高，而且能吸收硫、氯、氟、汞等有害物质，具有净化空气、保护环境的作用，因此，世界许多城市的园林绿化中都广泛应用。美人蕉传统的繁殖方式主要采用分切地下根茎的方法，繁殖速度慢、增殖效率低，而且连续营养繁殖造成病毒积累致使病毒病在各地相当普遍，严重影响其观赏价值。利用茎尖组织培养进行脱毒试管苗快繁，是目前大力繁殖与推广美人蕉的主要手段。关于美人蕉组织培养的研究报道较少[2,3]，本研究探索其组织培养高效的再生体系，以期为品种提纯复壮及遗传转化、性状改良奠定基础。2008,37(1):33-36.Subtropical Plant Science第·34· 37 卷1 材料与方法1.1 材料供试材料为目前城市绿化中普遍应用的大花美人蕉‘President’品种。1.2 外植体选择与处理选择生长健壮、无病虫害的优良母株，挖取带芽胞的根茎，去除表面老皮并用肥皂水清洗。用75%乙醇棉擦拭，然后采用不同的消毒剂及处理时间（0.1%升汞10min、2%次氯酸钠10min、2%次氯酸钠20min、2%次氯酸钠 + 0.1%升汞5min、2%次氯酸钠 + 0.1%升汞10min），封闭式振摇灭菌。无菌水冲洗5 次，置于超净工作台上备用。接种前，剥去外部叶片，露出生长点，立即切取茎尖进行接种。1.3 培养方法及培养条件试验于2006 年10 月在深圳市园林科学研究所组培室进行。诱导、增殖和生根培养基均选用MS为基本培养基，在不同培养阶段附加不同种类、不同浓度配比的植物生长调节剂（表2～表4），蔗糖3%，pH 5.8。培养温度(28±2)℃，光照强度2 500 lx，光照周期为14h/d，相对湿度70%～80%。每处理接种30 瓶。定期观察试管苗生长与分化情况。2 结果与分析2.1 不同消毒处理方式对外植体无菌化的影响因供试外植体取自美人蕉地下根茎，表面污染物较多，不易消毒，且不同植物及外植体的成熟度对消毒剂的反应不同，故本试验选用升汞和次氯酸钠进行灭菌效果比较，以筛选合适的消毒剂及消毒处理时间。由表1 可知，2%次氯酸钠20min 处理的无菌化效果较好，但茎尖褐化较严重，说明灭菌时间过长对去老皮后的幼嫩根茎影响较大。0.1%升汞10min 处理与2%次氯酸钠 + 0.1%升汞 10min处理，无菌化效果差异不大，但2%次氯酸钠 + 0.1%升汞 10min 处理有轻微药害。因此，后续实验选用0.1%升汞处理10min 进行外植体消毒。2.2 不同生长调节剂配比对芽诱导的影响以MS 为基本培养基，附加不同浓度6-BA、NAA、2,4-D、KT、TDZ 等（表2），以筛选出较适宜美人蕉茎尖诱导分化的配方。因美人蕉根茎具有休眠特性，芽诱导分化较难。TDZ 具有很强的促进细胞分裂活性，0.05～1.0μmol/L 即可有效促进分化[4]，因此，本实验对TDZ 的诱导效果进行初步探索。试验表明，在不添加任何生长调节剂的MS 基本培养基（1 号）上，茎尖接种10d 后开始生长，叶片展开后，生长停止；15d 后转接到新的MS 培养基上无明显生长，随后叶片逐渐变黄、萎蔫，说明基本培养基中添加生长调节剂是美人蕉离体培养的必要条件。在仅添加6-BA 的2、3、4 号培养基中，高浓度的2 号培养基分化率为33.33%，明显好于3、4号培养基，说明美人蕉启动芽诱导分化需要高浓度的细胞分裂素（表2）。11～16 号培养基添加物为不同生长调节剂与TDZ 组合（表2）。仅添加TDZ 的培养基分化率为0，而多种生长调节剂配合使用分化效果更好[5]。其中15 号培养基的侧芽分化率最高，达63.33%，且每个茎尖可增殖2～3 个侧芽，但个别茎尖经多次转接后有畸形芽；与2 号培养基相比，分化率明显提高，说明添加低浓度TDZ 可促进芽诱导分化（表2）（图版-a）。5、6、7 号培养基为生根培养基，探讨NAA 对美人蕉茎尖生长和生根的影响。试验结果初步说明美人蕉在6-BA/NAA 小于2/0.5 时生根率可达50%以上（表2）。8、9、10 号培养基，探讨美人蕉脱分化，诱导愈伤组织，但结果均不理想。因此，建立高效的美表1 不同消毒剂及处理时间对外植体无菌化的影响处 理 接种数污染数污染率(%) 药害情况0.1%升汞10min 30 5 16.67 基本无药害2%次氯酸钠10min 30 12 40.00 无药害2%次氯酸钠20min 30 4 13.33 20%有轻微药害2%次氯酸钠+0.1%升汞5min 30 10 33.33 3%有轻微药害2%次氯酸钠+0.1%升汞10min 30 5 16.67 7%有药害第1 期 王丹,等：大花美人蕉茎尖组织培养技术研究 ·35·人蕉遗传转化再生体系还需进一步探索愈伤组织诱导途径。2.3 芽继代增殖为了探讨优化的芽继代增殖培养基配方，按表3 设计6-BA、NAA、TDZ 的正交实验，以15 号培养基上分化出的丛生芽为接种材料，进行继代增殖培养（图版-b）。由表3 可见，除17、18 号培养基外，低浓度TDZ（0.03mg/L）的分化促进作用较高浓度（0.3mg/L）的效果好，说明高活性的TDZ 浓度过高反而抑制分化。当TDZ0.03mg/L 时, NAA 0.1mg/L 促分化作用显著优于NAA0.5mg/L。在TDZ、NAA 浓度相同的情况下，随着6-BA 浓度的升高，分化率提高。但随着继代次数的增多，含高浓度6-BA的27 号培养基分化率略有下降，甚至有个别畸形芽产生，说明高浓度细胞分裂素对短期的分化有促进作用[9]，但继代数次后，芽已经萌动，自身具有分化能力，需适当降低6-BA 浓度进行壮苗，以避免畸形芽产生。因此，在增殖过程中交替使用分化增殖系数较高的19 号培养基和27 号培养基，既可保证较高的芽分化率，又可使继代苗生长健壮，减少畸形芽。2.4 生根诱导增殖芽3～5cm 长时，转接到生根培养基上培养约10d 后，可见到根生成（图版-c）。接种20d 后统计生根结果（表4）。从表4可见，所用培养基上都有根生成，说明美人蕉生根较容易；结合生根率和生长势，我们认为MS + 6-BA 1.0 + NAA 0.5培养基较适宜美人蕉生根。表2 不同植物生长调节剂组合的比较植物生长调节剂(mg/L) 编号6-BA NAA 2,4-D KT TDZ分化率(%) 生根率(%) 备注1 0 0 0 0 02 9 0 0 0 0 33.33 参考[2]3 5 0 0 0 0 23.33 参考[3]4 3 0 0 0 0 6.675 2 1 0 0 0 60.006 2 0.5 0 0 0 56.677 2 0.2 0 0 0 08 0 0 4 0 09 0 0 2 1 0 参考[6]10 0 0.2 0 2 0 参考[7]11 0 0 0 0 0.2 012 0 0.1 0 0 0.2 23.33 参考[8]13 0 0 0.5 0 0.1 3.3314 0 0 1 0 0.1 6.6715 8 0 0 0 0.03 63.3316 5 0 0.5 0 0.03 50.00表3 不同生长调节剂配比对芽继代繁殖的影响生长调节剂(mg/L) 编号6-BA NAA TDZ接种数分化率(%)增值系数 生长势17 3.0 0.5 0.03 30 30.00d 1.20d ++18 3.0 0.5 0.30 30 36.67cd 1.50bc ++19 3.0 0.1 0.03 30 56.67a 1.67a ++20 3.0 0.1 0.30 30 33.33cd 1.46bc ++21 5.0 0.5 0.03 30 43.33c 1.60ab ++22 5.0 0.5 0.30 30 26.67d 1.33c ++23 5.0 0.1 0.03 30 56.67a 1.60ab ++24 5.0 0.1 0.30 30 53.33ab 1.57b +25 8.0 0.5 0.03 30 50.00b 1.53b ++26 8.0 0.5 0.30 30 26.67d 1.37c +27 8.0 0.1 0.03 30 60.00a 1.73a ++28 8.0 0.1 0.30 30 26.67d 1.37c +注：++ 表示生长势强；+表示生长势弱。同列中不同字母表示差异显著(P＜0.05＝，表4 同。表4 不同的生长调节剂配比对组培苗生根的影响生长调节剂(mg/L) 编号6-BA NAA接种数生根苗数生根率(%)植株生长势29 0 0.5 30 19 63.33b +30 0 1.0 30 21 70.00a ++31 1.0 0.5 30 20 66.67ab +++32 1.0 1.0 30 16 53.33c ++注：+++ 表示生长势强；++表示生长势中等；+表示生长势弱。第·36· 37 卷3 结 论美人蕉根茎生长在土壤中，无菌化操作较困难。灭菌试验表明，0.1%升汞震荡灭菌10min 效果较好，采回的外植体应尽快处理接种，放置时间过长伤口处易染菌，导致接种后褐化较严重。MS + 6-BA 8.0 + ZDT 0.03 + NAA 0.1 培养基能较好地诱导分化丛生芽，MS + 6-BA 3.0 + TDZ 0.03+ NAA 0.1 为较好的增殖培养基，在增殖培养过程中这两种配方交替使用效果更好；短时间使用高浓度生长调节剂对增殖有促进作用，但长时间使用高浓度生长调节剂会使组培苗质量下降。在试验中还发现，转接次数多的茎尖较转接次数少的分化率大，建议在接种后的10～20d 内及时转接。选用MS + 6-BA 1.0 + NAA 0.5 为生根培养基，生根率较高，根系粗壮、根毛密集，植株生长健壮（图版-d），且移栽成活率较高。参考文献:[1] Segeren W, et al. The genus Canna in Northern South America[J]. Acta Bot Neerl., 1971,20(6): 663-680.[2] 刘文萍,等. 美人蕉茎尖组织培养及快繁技术[J]. 北方园艺, 2001(6): 32.[3] 丁爱萍,等. 美人蕉组织培养及快速繁殖技术[J]. 园林科技, 2006(1): 11-12.[4] Singh N D, et al. The effect of TDZ on organogenesis and somatic embryogenesis in pigeonpea (Cajanus cajan L. Millsp)[J].Plant Science, 2003,164(3): 341-347.[5] 王关林,等. 高活性细胞激动素TDZ 在植物组织培养中的应用[J]. 植物学通报, 1997,14(3): 47-53.[6] 宣朴,等. 生姜茎尖组培快繁技术研究[J]. 西南农业学报, 2004,17(4): 484-486.[7] Kromer K, et al. In vitro cultures of meristem tips of Canna indica L.[J]. Acta Horticulturace, 1985,167: 279-286.[8] Vendrame W A, et al. In vitro propagation and plantlet regeneration from Doritaenopsis Purple Gem 'Ching Hua' flowerexplants[J]. HortScience, 2007,42(5): 1 256-1 258.[9] 刘敏. 花卉组织培养与工厂化生产[M]. 北京: 地质出版社, 2002: 101-102.

不同基质对几种花卉组培苗移栽影响的试验研究摘要：本试验通过对卡特兰、大花蕙兰、紫罗兰、新几内亚凤仙、捕蝇草、长寿花的组培苗移栽到不同的基质中，比较其成活率和长势，以期筛选出适宜各种花卉组培苗移栽的基质配方。结果表明：卡特兰组培苗最适宜移栽的基质为1／2苔藓+1／2砂子，移栽成活率高达100％；大花蕙兰组培苗最适宜移栽的基质为苔藓，移栽成活率达100％；非洲紫罗兰组培苗最适宜移栽的基质为蛭石，其成活率达到98％；新几内亚凤仙组培苗最适宜移栽的基质为1／2蛭石+1／2草炭，其移栽成活率为96．7％；捕蝇草组培苗最适宜移栽的基质为1／2椰绒+1／2珍珠岩，其移栽成活率达到100％；长寿花组培苗最适宜移栽的基质为1／3珍珠岩+2／3蛭石，其移栽成活率达到96．7％。关键词：卡特兰；大花蕙兰；非洲紫罗兰；新几内亚凤仙；捕蝇草；长寿花；基质：移栽当今植物生物技术已发展成为新技术革命的重要组成部分，在各个生产领域运用生物技术已收到了巨大的经济效益。其中利用组织培养进行种苗的快速繁殖是运用最广、效果最好的一项生物技术。组织培养繁殖种苗，具有能保持本品种特征特性，繁殖系数高，繁殖迅速，便于工厂化和集约化生产等特性，是人们广泛应用的一项技术。利用组织培养进行快繁具有常规方法无可比拟的优越性，所以组织培养是快速繁殖和无土栽培技术中较为热门的植物繁育方法。但在繁殖过程中，移栽是最为关键的一步，只有移栽成功，组培苗才能实现它的价值。为此，我们对卡特兰、大花蕙兰、非洲紫罗兰、新几内亚凤仙、捕蝇草、长寿花的组培苗进行了移栽试验，以期筛选出适宜移栽的基质配方。l 材料与方法1．1 试验材料选用天津农学院组培实验室培养的卡特兰、大花蕙兰、非洲紫罗兰、新几内亚凤仙、捕蝇草、长寿花为移栽材料。移栽植株的大小为，卡特兰的叶展开度在2 cm～2．5 cm(厘米)之间，大花蕙兰的株高在7 cm(厘米)左右，新几内亚凤仙和长寿花的株高为3 cm(厘米)左右，非洲紫罗兰的叶展开度在3 cm(厘米)左右，捕蝇草的株高在3 Cm(厘米)左右。1．2 方法1．2、1 组培苗的锻炼将几种花卉的组培苗从培养室取出，放置于炼苗室中，室内温度保持在25℃左右，相对湿度保持在75％左右，避免阳光直射。放置2 d～3 d(天)后，打开瓶盖，让幼苗适应外界环境，早晚用喷雾器对幼苗和室内进行喷雾，以维持室内较高的湿度环境。经一个星期的炼苗过程，即可进行移栽。而捕蝇草在炼苗时，不打开瓶盖，放置3 d～4 d(天)后立即移栽。1．2．2 移栽基质的准备将苔藓、树皮、椰绒等有机基质用1％KMnO4溶液浸泡3 h(小时)，之后用清水反复冲洗干净，做到不残留KMnO4溶液；把砂子、蛭石、珍珠岩等无机基质收稿日期：2004—03—1366用常规灭菌法灭菌，后配成移栽各种花卉组培苗的基质配方。卡特兰的移栽基质配方为：①蛭石；②1／2苔藓+1／2砂子；③1／2苔藓+1／2蛭石；④苔藓；⑤1／2苔藓+1／2树皮。其具体做法就是在盆底分别放置树皮、砂子、蛭石，然后再在上面放上苔藓。移栽时要将卡特兰的根均匀分放于苔藓之中，要栽紧，栽实，使根系紧密接触苔藓，以吸收养份和水份。大花蕙兰的移栽基质配方为：① 苔藓；②1／2树皮+1／2碎石；③1／2苔藓+1／2砂子；④1／3树皮+1／3椰绒+1／3砂子；⑤蛭石。移栽时在盆底放上砂子，然后在砂子上面分别放上苔藓、椰绒+树皮、蛭石。把苗栽直、栽实，不能伤到根。非洲紫罗兰的移栽基质配方：① 蛭石；② 椰绒；③1／2蛭石+1／2草炭；④1／3蛭石+1／3砂子+1／3草炭；⑤7／15蛭石+7／15草炭+1／15鸡粪。将各基质按配方搅和均匀，将非洲紫罗兰栽紧，以防影响根系的生长。新几内亚凤仙的移栽基质配方：① 蛭石；②椰绒；③1／2蛭石+1／2草炭；④1／2蛭石+1／2砂子。将基质混合均匀后就可栽植新几内亚凤仙了。捕蝇草的移栽基质配方为：①蛭石；②苔藓；③1／2蛭石+1／2珍珠岩；④1／2椰绒+1／2珍珠岩。选植株较大的栽植到各基质中。移栽长寿花时选用的基质配方为：①蛭石；②1／2草炭+1／2蛭石；③1／5珍珠岩+2／5草炭+2／5蛭石；④1／2砂子+1／2土壤；⑤1／3珍珠岩+2／3蛭石。直接把长寿花栽植到各基质中。1、2．3 移栽把基质放到经过消毒的塑料花盆中，组培苗经炼苗后就可移栽了。移栽是用镊子把各组培苗从培养瓶中取出，分成单株，用清水冲洗干净根上残留的培养基，要做到不伤根，然后分别用800倍的多菌灵溶液浸泡植株的根部20 rain(分钟)。选择生长势良好，植株健壮的组培苗，进行移栽。移栽后要用遮阳网遮荫，并用塑料薄膜覆盖，要常浇水和喷雾，保持湿度在80％左右；温度在22℃左右。捕蝇草的移栽苗要放置在装有水的水槽中，上方加盖遮阳棚和塑料薄膜，每天进行喷雾和浇水，避免苗子萎蔫。2 结果与分析2．1 不同基质配比对卡特兰组培苗移栽成活的影响为了选出适合卡特兰组培苗生长的基质，我们选用了4种基质配比，对卡特兰组培苗进行移栽试验，并以蛭石做基质作为对照。不同基质移栽卡特兰组培苗成活率的比较从表1可以看出，卡特兰组培苗的移栽以1／2苔藓+1／2砂子的复合基质最为适宜，其幼苗移栽成活率可达100％，而且植株长势最强；其次的移栽基质是以1／2苔藓+1／2树皮和1／2苔藓+1／2蛭石的复合基质，幼苗的成活率在7O％以上；以单独苔藓为基质的更差一些；而用蛭石作为移栽的植株成活率最低，并且植株长势最弱。说明移栽卡特兰最好以苔藓加通透性强的基质为好。2．2 不同基质配比对大花葸兰组培苗移栽成活的影响在移栽大花蕙兰的试验中，我们选用了4种基质配方对大花葸兰的组培苗进行移栽，并以蛭石做基质作为对照，以比较哪种基质更适合大花葸兰苗的移栽和生长。不同基质移栽大花蕙兰成活率的比较从表2结果可以得出结论，以单独苔藓为基质的大花葸兰组培苗的移栽成活率最高，达到100％，而且植株长势最强，植株高度达到10．8 cm(厘米)；而以1／2苔藓+1／2砂子和1／2树皮+1／2碎石为基质的次之，以1／3树皮+1／3椰壳纤维+1／3砂子为基质时的成活率更低一些；以蛭石为基质的成活率最差，植株长势最弱。说明大花葸兰组培苗的生长需要较好的通透性，以苔藓和苔藓加大颗粒的基质为好。2．3 不同基质配比对非洲紫罗兰组培苗移栽成活的影响选用4种基质和蛭石为对照对非洲紫罗兰的组培苗进行移栽试验，比较各种基质中组培苗的成活率和长势。观察一个月后，调查成活率和植株开展度，结果如表3所示。从表3可以看出，不同基质移栽非洲紫罗兰组培苗，其成活率和长势有很大的差异，其中以移栽到蛭石中的其成活率和植株开展度明显高于其它几种基质配比的，成活率达到98％，开展度达11．0 cm(厘米)；而以1／2蛭石+1／2草炭、1／3蛭石+1／3砂子+1／3草炭和椰绒为基质的植株成活率和长势逐渐下降；但以7／15蛭石+7／15草炭+1／15鸡粪为基质移栽非洲紫罗兰时，其成活率明显低于其它几种基质，说明在移栽非洲紫罗兰组培苗时，不宜在基质中添加有机肥料。最适合非洲紫罗兰组培苗移栽的基质为蛭石。2．4 不同基质配比对新几内亚凤仙组培苗移栽成活的影响选用4种基质配方和以蛭石为对照对新几内亚凤仙组培苗进行移栽试验，将移栽后的凤仙组培苗放入保温、保湿的塑料棚中，移栽一个月后进行调查。新几内亚凤仙组培苗的移栽适应多种基质，以1／2蛭石+1／2草炭的基质移栽凤仙组培苗为最好，成活率达到87．1％，植株高度达12．5 cm(厘米)；在蛭石、椰绒和1／2蛭石+1／2砂子中组培苗的成活率也较高，生长情况也较好；但在1／2树皮+1／2碎石中，组培苗的成活率最低，只有33．3％，生长最差，只达5．3 cm(厘米)。说明凤仙组培苗的生长要求保水性较好的基质，而通透性强的基质不适合凤仙的移栽。2．5 不同基质配比对捕蝇草组培苗移栽成活的影响捕蝇草是起源于美洲沼泽地带的一种植物，其具有捕虫的功能，是一种有一定经济价值的植物。为了研究其组培苗移栽成活的情况，我们选用了3种基质和蛭石作为对照进行捕蝇草的移栽试验，以期筛选出适宜的捕蝇草移栽配方。移栽一个月后调查其植株成活率和植株长势用1／2椰绒+1／2珍珠岩移栽捕蝇草时，其组培苗成活率最高，达到100％，而且植株长的最大，达到5．0 cm(厘米)；其次是以苔藓为基质的，成活率为9O％，植株开展度为4．1 cm(厘米)；再次为以1／2蛭石+1／2珍珠岩为基质的，成活率为78．6％ ；而以蛭石为基质的成活率最低，只有46．7％。这说明以1／2椰绒+1／2珍珠岩配制成的基质更适合于捕蝇草组培苗的生长。2．6 不同基质配比对长寿花组培苗移栽成活的影响为了选出适合长寿花组培苗生长的基质，我们选用了5种基质配比，对长寿花组培苗进行了移栽试验，以比较哪种基质更适合长寿花的生长。观察一个月后，我们进行了调查，结果如表6所示。从表6可以看出，长寿花组培苗在几种基质中的成活率都比较高，而且植株的长势也比较接近，说明长寿花适合多种基质的移栽。但其中以1／3珍珠岩+2／3蛭石的基质最适合。

可以上QQ搜索相关的QQ群~然后寻找帮助~~

你可以根据不同种类的花,做不同的分析