您当前的位置:首页 > 医学论文>医学护理论文

辛伐他汀对缺血再灌注损伤大鼠肾脏的影响机理

2015-10-05 14:19 来源:学术参考网 作者:未知

 [摘要] 目的 探讨辛伐他汀(Simvastatin)对肾缺血再灌注损伤(IRI)的保护作用。 方法 建立大鼠肾缺血再灌注损伤模型,随机将动物分为Simvastatin组,缺血再灌注(IR)组,锌原卟啉(ZnPP)组,假手术(sham)组。测定各组大鼠血清尿素氮(BUN)、肌酐(Cr)的含量,并进行肾组织光镜形态学观察和免疫组化分析血红素加氧酶-1(HO-1)的表达情况。 结果 IR组和ZnPP组BUN、Cr值升高,HO-1的表达少或几乎不表达,肾组织结构紊乱;Simvastatin组除HO-1表达明显增多外,还显著逆转上述改变,组间差异有统计学意义(P < 0.05)。 结论 Simvastatin可上调HO-1的表达,减轻大鼠肾脏的IRI。
  [关键词] 辛伐他汀;缺血再灌注损伤;血红素加氧酶-1
  [中图分类号] R692 [文献标识码] A [文章编号] 1673-7210(2012)10(a)-0012-03
  肾脏在缺血再灌注(IR)过程中会严重影响其生理功能,如何减轻肾缺血再灌注损伤(IRI),成为目前研究的热点。细胞在受到应激刺激时,会启动内源性保护机制[1], HO-1就是其中的一种方式[2],它可被许多因素诱导而表达[3]。HO-1与IRI密切相关[4],其分解血红素得到的产物中有重要的自由基清除剂及抗IRI因子[5]。关于他汀类药物的体外实验已经证实该药物能诱导平滑肌细胞中HO-1的表达[6]而发挥血管保护功能。在心、脑等器官的IR过程中,辛伐他汀(Simvastatin)能诱导HO-1高表达减轻其损伤[7-8]。本实验采用肾脏IRI大鼠模型,应用Simvastatin干预,观察其对肾脏IRI组织中HO-1表达以及肾脏组织炎症反应程度的影响,并探讨其可能的机制。
  1 材料与方法
  1.1 动物选择及分组
  健康雄性Wistar大鼠40只,体重(250±20)g。大鼠实验前适应饲养环境7 d后随机分四组:Simvastatin组、IR组、锌原卟啉(ZnPP)组、假手术(sham)组,每组各10只。
  1.2 IRI模型制备
  Simvastatin组术前给予Simvastatin 10 mg/(kg·d)灌胃7 d;IR组术前给予等体积生理盐水灌胃7 d;ZnPP组术前24 h 给予HO-1抑制剂ZnPP 5 mg/kg腹腔注射;sham组常规饲养。各组末次给药24 h后,全部大鼠经腹腔注射2%戊巴比妥钠40 mg/kg予以麻醉,从腹正中行4 cm纵行切口打开腹腔,仔细分离右肾蒂及肾周筋膜,充分游离右侧肾脏后结扎右肾蒂并切除右肾;同法分离左侧肾脏肾蒂,充分显露左肾动脉及肾脏组织,除sham组外均用动脉夹夹闭左肾蒂45 min,再灌注左肾,观察左肾色泽由暗红色变为鲜红色,表明灌注成功。还纳肠管于腹腔原位并缝合切口,放回原饲养场所待自然清醒并自由饮食。
  1.3 标本制备及检测
  1.3.1 尿素氮、肌酐水平测定 再灌注24 h后,抽取下腔静脉血样约3 mL,10 000 r/min离心10 min,上清置于-20℃冰箱保存。AU400生化分析仪测量血BUN、Cr水平。
  1.3.2 肾脏组织学观察及HO-1免疫组化测定 抽血后处死大鼠取左肾,用于组织学观察的肾组织按照切片制备要求处理并保存,然后按免疫组化三步法制备切片。结果判断:HO-1阳性反应为胞质呈棕黄色颗粒染色,采用病理图像分析软件半定量分析。
  1.4 统计学方法
  采用SPSS 13.0统计学软件进行数据分析,计量资料数据用均数±标准差(x±s)表示,三组间比较采用方差分析,组间两两比较采用q检验;以P < 0.05为差异有统计学意义。
  2 结果
  2.1 各组大鼠血清尿素氮、肌酐水平比较
  与sham组比较,另三组大鼠都有不同程度的肾功能损害(P < 0.01);与IR及ZnPP组相比,Simvastatin组BUN、Cr值明显较低(P < 0.01);ZnPP组肾功能损伤重于IR组(P < 0.01)。见表1。
  2.2 各组大鼠肾脏病理变化的比较
  取平展、细胞形态和组织结构清晰的组织切片,依据Paller法[9]可见,ZnPP组肾脏损伤最重,以管型形成、肾间质出血并炎性细胞浸润为主;除sham组外,Simvastatin组肾脏损伤最轻,仅见部分轻度水肿样变性,偶见管型及炎性细胞浸润。与sham组比较,各组肾小管评分均较高(P < 0.05);与IR组相比,Simvastatin组肾小管评分明显降低(P < 0.05),表明Simvastatin的应用可减轻大鼠肾组织损伤。见表2。
  2.3 各组大鼠HO-1表达水平比较
  用半定量分析法,光镜下观察被染成棕褐色细胞的分布情况,无染色为0分,偶有染色为1分,局灶染色为2分,弥漫染色为3分。结果发现,ZnPP组HO-1几乎不表达,假手术组仅有微量表达,IR组呈局灶性表达,Simvastatin组HO-1表达最强。与sham组相比,另外三组HO-1表达差异均有统计学意义(P < 0.05);Simvastatin组HO-1的表达高于其他组(P < 0.05),说明应用Simvastatin可以提高HO-1表达水平;应用ZnPP后,HO-1基本不表达。见表3。
  3 讨论
  他汀类药物又称HMG-CoA还原酶抑制剂,是经典和有效的降脂药物,已广泛应用于肾脏疾病的治疗。该类药物不仅具有降血脂的功能,而且还能保护肾脏,延缓肾脏疾病进展[10]。目前研究已证实在心脏、肝脏的IRI中,HO-1的高表达可有效地保护脏器的结构并改善其功能[11-12]。
  Cr是肌酸的代谢终产物,而BUN是体内蛋白氮代谢的终产物,主要通过肾脏排泄,依据二者的含量变化可评估肾功能。本实验发现,肾脏IRI后大鼠血清Cr和BUN明显增高,而Simvastatin可以明显降低肾IRI大鼠血清Cr和BUN值。从光镜可以看到,单纯IR大鼠的肾组织切片中有肿胀明显的上皮细胞,该类细胞有程度不一的变性、坏死,间质可见明显充血水肿及炎性细胞浸润;相反Simvastatin组仅见轻度细胞肿胀,未见典型的缺血性改变。这些结果不仅说明本实验肾IRI模型建立成功,而且提示Simvastatin对急性肾IRI具有明显的保护作用。

 自20世纪80年代末发现HO-1并证实其具有和热休克蛋白32相同的结构后,引发了人们对HO-1作为应激反应蛋白新的认识。Stocker[13]发现在各种形式的氧化应激下HO-1均被诱导激活,于1990年提出这种酶可能对细胞起保护作用。大量实验研究表明,无论体内还是体外,HO-1是一种保护各种活性氧和活性氮所致氧化损伤的潜在抗氧化剂[14]。应用HO-1基因敲除的肾损伤动物模型,Nath等[15]证实,HO-1的表达是阻止肾小管间质炎症反应及炎症因子基因表达所必需的。笔者在本研究中除建立IRI模型外还应用HO-1抑制剂ZnPP作为对照进一步观察HO-1是否在肾IRI过程中发挥作用,ZnPP对HO-1的抑制主要是通过促进组织释放大量的微粒体血红素实现的。本实验发现,肾IRI作为应激原可诱导HO-1的表达,但并不能阻止肾脏损害的发生,如果在肾脏IRI前应用Simvastatin诱导HO-1表达,则可明显改善肾功能,减轻肾脏损害。本实验结果显示,sham组肾小球、肾小管结构基本正常,几乎无HO-1表达;IR组肾小管上皮细胞肿胀,出现不同程度的变性、坏死,HO-1表达较sham组显著增强;Simvastatin组缺血性改变较IR组明显减轻,接近正常,HO-1表达较高。Simvastatin使HO-1表达上调,可能是Simvastatin在转录和翻译水平上调肾缺血细胞HO-1的表达,从而使HO-1合成增加,使得肾脏对缺血及氧化损伤的抵抗能力增加,显著改善大鼠肾脏IRI。目前的研究报道显示,他汀类药物通过丝裂原活化蛋白激酶和核因子E2相关因子2等信号通路调节HO-1的表达[16],但作为一种肾缺血再灌注的保护药物,在最佳剂量、安全性方面有待于进一步研究。
  [参考文献]
  [1] 吴刚,梁健,成东华,等.HSP70和HO-1诱导对鼠肝缺血再灌注损伤的保护作用[J].中国医科大学学报,2004,33(2):125-127.
  [2] 刘明,赵晓宇,周虹.血红素氧化酶-1在缺血/再灌注损伤中的保护作用[J].生命的化学,2004,24(1):50-52.
  . Kidney Int,2001,59(1):378.
  [4] Zheng D,Yan L,Manjeri A,et al. Heme oxygenase-1 in tissue pathology:The Yin and Yang [J]. Amer J Path,2000,156:1485-1488.
  . Transplantation,2002,74:905-912.
  [6] Lee TS,Chang CC,Zhu Y,et al. Simvastatin induces heme oxygenase-1:a novel mechanism of vessel protection [J]. Circulation,2004,110(10):1296-1302.
  [7] 陈乱颖,覃数,向睿,等.辛伐他汀对急性心肌梗死大鼠血红素加氧酶-1的影响[J].中国药理学通报,2009,25(4):535-538.
  [8] 武棋,李欣.辛伐他汀对脑缺血-再灌注大鼠神经细胞的保护作用[J].中国脑血管病杂志,2007,4(9):410-413.
  [9] Paller MS,Hoidal JR,Ferris TF. Oxygen free radicals in ischemic acute renal failure in the rat [J]. J Clin Invest,1984,74(4):1156-1164.
  [10] Sukhija R,Bursae Z,Kakar P, et al. Effect of statins on the development of renal dysfunction [J]. Am J Cardiol,2008,101(7):975-979.
  . Transplantation,2002,73(2):287-292.
  [12] 汪宝军,竹润芳,岳云霄,等.巴戟天寡糖对大鼠心肌缺血再灌注损伤的影响[J].中国医药导刊,2009,11(4):625-626,629.
  [13] Stocker R. Induction of heme oxygenase as a defense against odxidative stress [J]. Free Rad Res Commun,1990,9(4):101-112.
  [14] 关里,温韬,张雁林,等.血红素加氧酶的生物学功能研究进展[J].中国工业医学杂志,2007,20(3):180-182.
  [15] Nath KA,Vercellotti SM,Grande JP,et al. Heme protein induced chronic renal inflammation:suppressive effect of induced heme oxygenase-1 [J]. Kidney Int,2001,59(1):106-117.
  [16] Kim YM,Pae O,Park JE,et al. Heme oxygenase in the regulation of vascular biology:from molecular mechanisms to therapeutic opportunities [J]. Antioxid Redox Signal,2011,14(1):137.

相关文章
学术参考网 · 手机版
https://m.lw881.com/
首页