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原始图谱做负导数换算后得到熔解曲线的导数图谱，导数图谱会出现熔解峰，熔解峰对应的温度就是Tm值。 随着PCR的进行，双链产物的不断增加，嵌入到双链中的荧光分子也不断增多，荧光信号逐渐增大。在扩增结束后，体系内的双链产物最多，荧光信号强度达到一个最高值。之后我们设置一段由65℃逐渐升温到95℃的程序，随着温度逐渐升高，DNA双链逐渐解链为单链，嵌入到双链中的荧光染料分子也会逐渐脱落下来，荧光信号强度逐渐下降。在某段温度时，双链迅速而大量地解链，荧光信号强度骤然下降，在这段温度中，一半的双链解链的温度我们称为熔解温度（即Tm值）。最终，DNA双链完全解链为单链，荧光值下降为一个本底水平。这一整体过程中的荧光信号随温度变化的曲线就是熔解曲线，称为原始图谱。
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总的DNA双螺旋结构降解一半的温度称为熔解温度（Tm），不同序列的DNA，Tm值不同。DNA中G－C含量越高，Tm值越高，成正比关系。原理扩增反应完成后，通过逐渐增加温度同时监测每一步的荧光信号来产生熔解曲线，熔解温度上有一特征峰（Tm，DNA双链解链50%的温度），用这个特征峰就可以将特异产物与其它产物如引物二聚体区分开，因为它们在不同的温度熔解线，随着反应中双链DNA变性，荧光染料又恢复到游离状态导致荧光信号降低，用荧光信号改变与温度作图，在扩增产物的只有染料法才需要做熔解曲线，探针法没有必要，因为熔解曲线是由于染料法的特异性差，所以通过熔解曲线考察扩增产物是否是目标产物，与电泳的其中的一个目的相同，但熔解曲线毕竟是数学推导，并且结果中包含了仪器的误差。应用分析real time PCR 结果的特异性：出现单峰说明扩增产物特异性好，出现杂峰特异性差，存在非特异性扩增，如引物二聚体等。一般是用SYBR Green作为荧光染料的时候使用，因为SYBR Green染料是非特异的染料，只要有扩增，染料就可以镶嵌在双链中发出荧光。做溶解曲线是为了观察我们扩增发出荧光的片段是不是我们需要的产物。如果溶解曲线做出来只有单峰，且出峰位置是你的退火温度，那么这个是你的产物发出的荧光，实验结果有效。
PCR熔解曲线分析法是做realtime-pcr时分析，用来确定不同的反应产物，包括非特异性产物的分析方法。原理是在扩增反应完成后，通过逐渐增加温度的同时监测每一步的荧光信号来产生溶解曲线，随着反应中双链DNA变性，荧光染料又回复到游离状态导致荧光信号降低，用荧光信号改变的负的一次导数与温度作图，在扩增产物的溶解温度上有一特征峰（Tm，DNA双链解链50％的温度），因为它们在不同的温度溶解，所以用这个特征峰就可以将特异产物与其它产物如引物二聚体区分开。我的回答不知道对你是不是有参考作用。
医学sci杂志reviewer要求提供原始数据，不但必须提供数据，还要提供你的数据处理过程。SCI论文对数据真实性的要求是很高的，你必须如实提供原始数据、数据的处理过程，还要提供所使用处理的。有些单位使用盗版进行数据处理，这都是不能被允许的。之所以这样做，就是为了证明研究结论的准确可靠。SCI杂志社拿到你的数据之后，会找到相关的专家用你的数据进行认真核实，并且进行重复试验，如果其他专家能够得到和你一致的结论，就说明你的结论是经得住推敲的。如果其他专家发现你的数据有问题，或者按照你的数据进行重复试验、处理，无法得到你的结论，就说明你的结论是站不住脚的，不是出现错误，就是造假，这样的论文一定会被打回来。
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影响因子不很高的杂志一般很少碰见要提供演示数据的
是确实需要的。对数据真实性的要求是很高的，必须如实提供原始数据、数据的处理过程，还要提供所使用处理的。有些单位使用盗版进行数据处理，这都是不能被允许的。
不需要。论文的原始数据是对论文主要观点的最有力的支撑，但是在投稿时，默认你的观点和实验测试的结果是正确的，而不是一定要完全的去验证你的方法，只有在提出需要验证的情况下才需要提供原始数据。其他情况不用。
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