那就写你实习的药厂的啊，然后结合你专业学的知识去写，但具体的要求还要根据你们学校发的任务书为准，你们实习的药厂只能做为一个案例，具体的就看你选的是什么题目了，题目很重要。
篇一：
经验之谈：首先我在这次任务中担任检验员，虽然任务算是最轻的，但重要是熟悉各个部门操作流程.主要方面有①各岗位车间的标准程序规章②设备仪器工具的使用③原料 辅料检验入库发放记录④关键工序 主要瓶颈⑤不同环境下生产产品的检验⑥检验记录其次这次实习，帮助我树立药品生产反应是中心、工艺是主体、设备是环境、检验是条件的思想，使我认识到药品生产是按工艺和检测两大主线来实施的通过这种普遍联系的整体-部分-整体的思维方法和认识过程，使我学到一套科学的训练方法提高动手、观察、分析、综合等四种能力，促使生产能力的提高落到实处：动手能力是收集毕业设计资料与素材的首要能力观察能力是生产能力强弱的直接体现分析能力是前两种能力的发展综合能力是前三种能力的总括和提高. 通过认识实习--生产实习--毕业实习在时间和空间上形成一个实践链，这个链的高端环节毕业实习-毕业设计（论文）将使学生的四年学习的庞杂而繁多的知识和理论得到一次新的全面的"装配"与升华 我这次毕业实习的题目是《青霉素的工业生产及相关影响检测》.青霉素由真菌产黄青霉产生的青霉素的生产目前主要用微生物发酵法进行生物合成很少数亦可用化学合成法生产通过实习期间对不同PH值 温度最适时间生产的青霉素进行管碟法检测.而系统的认识到了青霉素质量检验.通过不同环境生产青霉素为调控生产青霉素提供最佳的发酵条件，和缩短生产周期，提高产量提供科学依据.最后查阅青霉素的主要用途（研究和医药方面）了解到临床上主要用于革兰阳性球菌例如链球菌、肺炎球菌、敏感的葡萄球菌等的感染和用于分子生物学研究 这次实习对我来说收获非常大，真是学有所用，我可以把以前书本上学到的知识和实际工作结合起来，使我对我所学的专业技术有了更大的兴趣，也学到了一个科研工作者应该有的态度，就应该是脚踏实地，吃苦耐劳在以后的学习生活中我一定要积极主动学习老师同学的优点和长处本次实习相信对我以后的工作会有很大帮助，是我走向社会的最后一堂很有意义的实践课 以上也算是我的实习工作总结，最后，我感谢学校给我这次实习的机会以及精心指导和鼓励我实习的老师致以诚挚的谢意和崇高的敬意 。
篇二：
【摘要】 目的研究紫苏属不同（变）种不同部位无机元素及维生素的组成及含量。方法利用原子吸收分光光度计及原子荧光分光光度计对无机元素进行测定；分别提取紫苏属植物中水溶性及脂溶性维生素，并采用高效液相色谱法进行分析。结果紫苏属不同（变）种不同部位所含无机元素及维生素种类基本相同，但含量存在显著差异。结论紫苏属不同（变）种中Ca，Fe，Mg等含量较高，但其As，Hg含量也应得到人们的重视；同时，在所测材料中检测到丰富的VC，VD2，VD3。从不同材料来看，野生紫苏无机元素及维生素含量丰富；从不同部位来看，中上部叶的营养价值相对较高。
【关键词】 维生素 无机元素 高效液相色谱法 原子吸收 原子荧光
紫苏属Perilla L．系唇形科Labiatae草本植物。据《中国植物志》记载，紫苏属植物全世界有1个种3个变种：即紫苏（原变种，包括紫苏和白苏）Perilla fruteseens var.frutescens (L．)Britton，野生紫苏P．frutescens (L．) Britton var．acuta (Thunb.) Kudo.
回回苏P．frutescens (L.)Britton var．crispa (Thunb.)Hand.-Mazz., 耳齿紫苏P. frutescens(L.)Britton var． auriculato-dentata C.T.Wuet Husanex H.W.L.。该属植物分类一直很混乱，20世纪90年代国内学者结合本草考证、植物分类学、蛋白谱带及挥发油组成等对本属植物进行研究，认为紫苏与白苏应为两种不同的植物，白苏应为正P．frutescens(L．)Britt，紫苏应为其变种P．frutescens(L．)Britt．var.arguta；同时发现耳齿苏实属野生紫苏〔1～4〕。关于紫苏属植物的准确分类还有待于进一步研究。 紫苏属植物主要产于亚洲东部，我国均有。其中，紫苏为《中国药典》收载入药，属于第1批次被我国卫生部颁布的既是食品又是药品的60种中药之一。但紫苏属中的各（变）种在民间皆供药用。紫苏茎叶具有治疗风寒感冒、头痛咳嗽、胸腹胀满、抑菌、止血、镇静和镇痛等疗效〔5〕。前人对紫苏属植物药用价值的研究主要集中在挥发油上，而对其无机元素及维生素的相关报道甚少。本实验对紫苏属植物不同部位中Fe，Mn，Mg，Zn，Cr，Cu，Cd，Pd， Hg，Ca，As等11种无机元素及维生素C，维生素PP，维生素B6，维生素B2，维生素B1，δ-维生素E，维生素D2，维生素D3， 维生素K，α-维生素E等10种维生素进行了比较分析，以期为紫苏属植物资源的合理开发利用提供重要依据。
1 器材
1.1 仪器
日本岛津公司高效液相色谱仪（SPD-10A VP紫外-可见检测器、LC-6A高压泵、CTO-10AS VP柱温箱〈含7725i型手动进样器〉），HITACHI公司Z-2000型原子吸收分光光度计，北京科创海光仪器有限公司AFS-3000型双道原子荧光光度计，高性能空心阴极灯（由北京有色金属研究总院提供），Thermo BR4i型冷冻离心机，Sartorius CP225D型电子天平，Sartorius BP-20型pH计，HS 6150D型超声清洗器，Millipore Mill-Q型超纯水系统，九阳牌JYL-350型料理机，江苏金坛中大仪器厂SHZ-82A型气浴恒温振荡器，Micromax型离心机（ICE公司），上海恒科技有限公司HWS28型电热恒温水浴锅，国华公司DB-3电热板，沈阳市节能电炉厂马沸炉。
1.2 试剂
1 000 mg/L各无机元素标准储备液均由国家标准物质研究中心提供; 维生素B1，维生素B2，维生素B6，烟酸和维生素C均由Supelco公司提供；维生素D2、维生素D3、α-维生素E、δ-维生素E、维生素K1标准样品均由Sigma公司提供；己烷磺酸钠（山东省禹城市中美色谱产品厂）、甲醇（上海陆都化学试剂厂）为色谱纯；磷酸、偏磷酸、盐酸、醋酸乙酯、无水乙醇均为分析纯。
1.3 材料
实验材料来自于美国Germplasm resources information network（GRIN）、四川中江及四川雅安等地共计4份，均由四川农业大学农学院吴卫博士鉴定，为Perilla L.植物。其编号、学名及来源见表1。所有材料均同时播种于四川农业大学农场，花期分上、中、下叶分别采收（上-茎尖3～5叶，下-茎基部倒数3～5叶，其余为中部叶），鲜样待测维生素。同时，在70℃下分别干燥上、中、下叶及同期采收的茎，研磨，过60目筛，干燥器中保存，粉末待测无机元素。 表1 4种紫苏属材料的学名及来源（略）
2 方法与结果
2.1 样品前处理方法
2.1.1 无机元素样品的前处理
Fe，Mn，Mg，Zn，Cr，Cu，Cd，Pd，As及Hg的样品制备分别参见GB12396-90，GB/T5009.14-1996，GB/T5009.15-1996，GB/T5009.13-1996，GB/T5009.15-1996，GB/T5009.12-1996，GB/T5009.11-1996及GB/T5009.17-1996〔6〕。
Ca的样品制备：精密称取待测样品0.5 g左右，至于瓷坩埚内，电热板炭化至无烟，（500±25）℃马沸炉6～8 h，冷却。10 ml HCl（6∶6）消煮近干，5 ml 5%HCl清洗并转移至50 ml容量瓶，加入硝酸镧溶液，确保1%含量，纯水定溶，待测〔7〕。
2.1.2 水溶性维生素的提取
将每份采收的上、中、下新鲜材料清洗干净，沥干表面水分后，分别精确称取10 g左右，加入30 ml 5%HPO3打成匀浆，多次加入2%HPO3 清洗并转移匀浆入棕色试剂瓶，共计30 ml，在冰水混合条件下超声浸提30 min。将提取液在4℃，8 000 r/min条件下离心15 min，取上清液移入100 ml棕色容量瓶；用2%的HPO3清洗匀浆试剂瓶，洗液连同离心残渣再次离心15 min，取上清液；重复清洗两次；用2%的HPO3定容。取上述定容后的溶液于1.5ml离心管中，在4℃，10 000 r/min条件下离心10 min，清液待测。以上操作均要求避光、迅速，样品处理后在4℃保存，防止维生素分解。
2.1.3 脂溶性维生素的提取
同样将新鲜材料清洗沥，称取样品10 g于匀浆机中，加入无水乙醇25 ml，匀浆2 min后，准确称取匀浆20 g于150ml具塞三角瓶中，移液管精确加入20 ml无水乙醇，于50℃气浴恒温震荡器上震荡50 min，取下，待冷却后，转移至50 ml离心管中，8 000 r/min离心15 min，上清液转移至分液漏斗中，残渣用无水乙醇洗3遍，10 ml/次，分别离心15 min，合并上清液，加入10%NaCl溶液5 ml，正己烷20 ml，快速混匀2 min，静置分层，取正己烷相，下液再加入正己烷10 ml，再次萃取，合并正己烷相于蒸发皿中，蒸至干，流动相转移并定容至10，取1 ml上清液10 000 r/min离心10 min，清液待测。以上操作应尽量迅速，避光。
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